Yıl: 2022 Cilt: 6 Sayı: 3 Sayfa Aralığı: 259 - 266 Metin Dili: Türkçe DOI: 10.29058/mjwbs.1172971 İndeks Tarihi: 25-01-2023

Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji

Öz:
Dişi genital kanalın durumunu izlemek için kullanılan vajinal sitoloji yöntemi, zaman içinde farklı metodlar ortaya çıksa da, kolay ve pratik olması nedeniyle sıklıkla tercih edilmektedir. 1917’de Stockard ve Papanicolaou’nun kobay vajinal lümen epitel hücrelerinin ovulasyon döngüsünün durumuna göre değişiklik gösterdiğini keşfetmelerinin ardından östrus siklusu takibi, dişi genital sistem çalışmalarının vazgeçilmez bir parçası olmuştur. Vajinal sitolojiyi göstermek için smear örneklerinin alınma zamanı ve yöntemi, uygulayıcının tecrübesi gibi çeşitli faktörler sonuçların doğruluğu üzerine etkilidir. Östrus siklusu, sıçan ve farelerde temel olarak dört faz gösterir: proöstrus, östrus, metöstrus ve diöstrus. Her fazın hücre tipi ve yoğunluğu farklıdır. Bu derlemede; fare ve sıçandan smear alma yöntemleri ve östrus siklus fazlarının özelliklerinin yanı sıra, elde edilen verilerin deneysel çalışmalarda kullanım alanlarına yönelik literatür bilgileri yer almaktadır. Ayrıca bu çalışma, dişi üreme sistemindeki dinamik değişikliklerin takibi, deneysel çalışmaların doğru planlanması ve sonuçların değerlendirilmesi yönünden dikkat edilmesi gereken noktaları belirtmesi ile dişi deneklerle çalışacak araştırmacılara kapsamlı bir bakış açısı sağlamayı hedeflemektedir.
Anahtar Kelime: dişi genital sistem fare östrus siklusu sıçan vajinal sitoloji

An Easy Way to Evaluate the Female Genital Canal in Mice and Rats: Vaginal Cytology

Öz:
Although different methods have emerged over time, the vaginal cytology method, which is used to monitor the condition of the female genital canal, is often preferred because it is easy and practical. In 1917, after Stockard and Papanicolaou discovered that guinea pig vaginal lumen epithelial cells change according to the state of the ovulation cycle, the oestrus cycle exhibiting has become an essential part of the female genital system studies. Various factors affect the accuracy of results, including timing, method of smear sample collection, and the practitioner's experience in demonstrating vaginal cytology. The oestrus cycle shows four basic phases: proestrus, oestrus, metestrus, and diestrus, in rats and mice. Each phase of the cycle has a different dominant cell type and density. In this review; In addition to the methods of taking smears from mice and rats and the characteristics of the estrous cycle phases, there is information on the use of the data from experimental studies. Also, this study aims to provide a comprehensive perspective to researchers who will work with female subjects by emphasizing the points to be considered in terms of monitoring the dynamic changes in the female reproductive system and correct planning and evaluating the results of experimental studies.
Anahtar Kelime: Female genital system Mouse Oestrous cycle Rat Vaginal cytology

Belge Türü: Makale Makale Türü: Derleme Erişim Türü: Erişime Açık
  • 1. Goldman JM, Murr AS, Cooper RL. The rodent estrous cycle: Characterization of vaginal cytology and its utility in toxicological studies. Birth Defects Res B Dev Reprod Toxicol 2007;80(2):84-97.
  • 2. Heape W. Memoirs: The sexual season of mammals and the relation of the pro-œstrum” to menstruation. Journal of Cell Science 1900;2(173):1-70.
  • 3. Byers SL, Wiles MV, Dunn SL, Taft RA. Mouse estrous cycle identification tool and images. PLoS One 2012;7(4):e35538.
  • 4. Cora MC, Kooistra L, Travlos G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicologic Pathology 2015;43(6):776-793.
  • 5. Vilos GA. The history of the papanicolaou smear and the odyssey of george and andromache papanicolaou. Obstetrics & Gynecology 1998;91(3):479-483.
  • 6. Li S, Davis B. Evaluating rodent vaginal and uterine histology in toxicity studies. Birth Defects Res B Dev Reprod Toxicol 2007;80(3):246-252.
  • 7. Long J, Evans HM, Evans HM. The oestrous cycle in the rat and its associated phenomena. Memoirs of the University of California. University of California Press, Berkeley, California; 1922.
  • 8. Rodriguez I, Araki K, Khatib K, Martinou JC, Vassalli P. Mouse vaginal opening is an apoptosis-dependent process which can be prevented by the overexpression of Bcl2. Dev Biol 1997;184(1):115-121.
  • 9. Nelson JF, Felicio LS, Randall PK, Sims C, Finch CE. A longitudinal study of estrous cyclicity in aging C57BL/6J mice: I. Cycle frequency, length and vaginal cytology. Biol Reprod 1982;27(2):327-339.
  • 10. (OECD) OftEC-oaD. Part 5: Preparation, reading and reporting of vaginal smears 2014 [Available from: https://www.oecd.org/ chemicalsafety/testing/40581357.pdf.
  • 11. Carvalho MC, Genaro K, Leite-Panissi CRA, Lovick TA. Influence of estrous cycle stage on acquisition and expression of fear conditioning in female rats. Physiol Behav 2021;234:113372.
  • 12. Sapmaz-Metin M, Topcu-Tarladacalisir Y, Kurt-Omurlu I, Weller BK, Unsal-Atan S. A morphological study of uterine alterations in mice due to exposure to cadmium. Biotechnic & Histochemistry 2017;92(4):264-273.
  • 13. Sapmaz M. Normal ve süperovule farelerde iyonizan radyasyonun ovaryum morfolojisi, östrus siklusu ve ovulasyon oranı üzerine etkilerinin incelenmesi. TÜ Histoloji ve Embriyoloji doktora programı: Doktora Tezi; 2008.
  • 14. Astwood EB. Changes in the weight and water content of the uterus of the normal adult rat. Am J Physiol 1939;126(1):162- 170.
  • 15. Mandl AM. The phases of the oestrous cycle in the adult white rat. Journal of Experimental Biology 1951;28(4):576-584.
  • 16. Champlin AK, Dorr DL, Gates AH. Determining the stage of the estrous cycle in the mouse by the appearance of the vagina. Biol Reprod 1973;8(4):491-494.
  • 17. Caligioni CS. Assessing reproductive status/stages in mice. Curr Protoc Neurosci 2009;Appendix 4:Appendix 4I.
  • 18. Mohammed S, Sundaram V. Comparative study of metachromatic staining methods in assessing the exfoliative cell types during oestrous cycle in sprague-dawley laboratory rats. International Journal of Morphology 2018;36(3):962-968.
  • 19. McLean AC, Valenzuela N, Fai S, Bennett SA. Performing vaginal lavage, crystal violet staining, and vaginal cytological evaluation for mouse estrous cycle staging identification. J Vis Exp 2012(67):e4389.
  • 20. Muratoğlu D. Kronik fizyolojik stres uygulamasının sıçan ovaryumlarında foliküler gelişim ve oosit rezevi üzerine etkileri: IGF1, AMH ve BCL-2’nin rolü. 2017 (Yüksek Lisans Tezi).
  • 21. Sugiyama M, Yasunaga A, Kobayashi R, Fukasawa H, Hashimoto O, Kurusu S, Sasada H, Yoshioka K. Improvement in identification of pro-estrous mice by using a novel method of detecting vaginal mucous cells. Cell Tissue Res 2021;383(3):1183-1190.
  • 22. Bakhshalizadeh S, Rabiee F, Shirazi R, Ghaedi K, Amidi F, Nasr-Esfahani MH. Assessment of PGC1α-FNDC5 axis in granulosa cells of PCOS mouse model. J Reprod Infertil 2018;19(2):89-94.
  • 23. Whitten WK. Modification of the oestrous cycle of the mouse by external stimuli associated with the male. J Endocrinol 1956;13(4):399-404.
  • 24. Allen E. The oestrous cycle in the mouse. American Journal of Anatomy 1922;30(3):297.
  • 25. Grasso P, Rozhavskaya M, Reichert LE Jr. In vivo effects of human follicle-stimulating hormone-related synthetic peptide hFSH-beta-(81-95) and its subdomain hFSH-beta-(90-95) on the mouse estrous cycle. Biol Reprod 1998;58(3):821-825.
  • 26. Kanter M, Metin MS, Kurt Ömürlü İ. Balb/C Türü dişi farelerde uniseksüel gruplamanın östrus siklusu üzerine etkileri. Yeni Tıp Dergisi 2010;27(4):235-239.
  • 27. Campbell CS, Schwartz NB. The impact of constant light on the estrous-cycle of the rat. Endocrinology 1980;106(4):1230- 1238.
  • 28. Young WC, Boling JL, Blandau RJ. The vaginal smear picture, sexual receptivity and time of ovulation in the albino rat. Anatomical Record 1941;80(1):37-45.
  • 29. Hubscher CH, Brooks DL, Johnson JR. A quantitative method for assessing stages of the rat estrous cycle. Biotech Histochem 2005;80(2):79-87.
  • 30. Rao RP, Kaliwal BB. Monocrotophos induced dysfunction on estrous cycle and follicular development in mice. Ind Health 2002;40(3):237-244.
  • 31. Nelson JF, Felicio LS, Osterburg HH, Finch CE. Altered profiles of estradiol and progesterone associated with prolonged estrous cycles and persistent vaginal cornification in aging C57BL/6J mice. Biol Reprod 1981;24(4):784-794.
  • 32. Campbell CS, Ryan KD, Schwartz NB. Estrous cycles in the mouse: relative influence of continuous light and the presence of a male. Biol Reprod 1976;14(3):292-299.
  • 33. Yang CX, Wang Y, Lu Q, Lian YN, Anto EO, Zhang Y, Wang W. Chronic stress influences nociceptive sensitivity of female rats in an estrous cycle-dependent manner. Stress 2020;23(4):386- 392.
  • 34. Barsom SH, Mansfield PK, Koch PB, Gierach G, West SG. Association between psychological stress and menstrual cycle characteristics in perimenopausal women. Women Health Iss 2004;14(6):235-241.
  • 35. Valsamakis G, Chrousos G, Mastorakos G. Stress, female reproduction and pregnancy. Psychoneuroendocrinology 2019;100:48-57.
  • 36. Casillas F, Betancourt M, Juárez-Rojas L, Ducolomb Y, López A, Ávila-Quintero A, Zamora J, Ommati MM, Retana-Márquez S. Chronic Stress Detrimentally Affects In Vivo Maturation in Rat Oocytes and Oocyte Viability at All Phases of the Estrous Cycle. Animals (Basel) 2021;11(9):2478.
  • 37. Silva SP, Beserra-Filho JIA, Kubota MC, Cardoso GN, Freitas FRS, Gonçalves BSM, Vicente-Silva W, Silva-Martins S, Custódio-Silva AC, Soares-Silva B, Maria-Macêdo A, Santos JR, Estadella D, Ribeiro AM. Palatable high-fat diet intake influences mnemonic and emotional aspects in female rats in an estrous cycle-dependent manner. Metab Brain Dis 2021;36(7):1717-1727.
  • 38. Guillen-Ruiz G, Cueto-Escobedo J, Hernandez-Lopez F, Rivera-Aburto LE, Herrera-Huerta EV, Rodriguez-Landa JF. Estrous cycle modulates the anxiogenic effects of caffeine in the elevated plus maze and light/dark box in female rats. Behav Brain Res 2021;413:113469.
  • 39. Martinez EM, Swartz WJ. Effects of methoxychlor on the reproductive system of the adult female mouse. 1. Gross and histologic observations. Reprod Toxicol 1991;5(2):139-147.
  • 40. Ronchetti SA, Novack GV, Bianchi MS, Crocco MC, Duvilanski BH, Cabilla JP. In vivo xenoestrogenic actions of cadmium and arsenic in anterior pituitary and uterus. Reproduction 2016;152(1):1-10.
  • 41. Singh KB, Mahajan DK, Tewari RP. Hormonal modulation of the vaginal bacterial flora in experimental polycystic ovarian disease. J Clin Lab Anal 1996;10(5):233-238.
  • 42. Smail MA, Soles JL, Karwoski TE, Rubin RT, Rhodes ME. Sexually diergic hypothalamic-pituitary-adrenal axis responses to selective and non-selective muscarinic antagonists prior to cholinergic stimulation by physostigmine in rats. Brain Res Bull 2018;137:23-34.
APA Yurtgezen Z, Ercetin D, SAPMAZ METIN M (2022). Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. , 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
Chicago Yurtgezen Zekiye Gülfem,Ercetin Deniz,SAPMAZ METIN Melike Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. (2022): 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
MLA Yurtgezen Zekiye Gülfem,Ercetin Deniz,SAPMAZ METIN Melike Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. , 2022, ss.259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
AMA Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. . 2022; 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
Vancouver Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. . 2022; 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
IEEE Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M "Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji." , ss.259 - 266, 2022. 10.29058/mjwbs.1172971
ISNAD Yurtgezen, Zekiye Gülfem vd. "Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji". (2022), 259-266. https://doi.org/10.29058/mjwbs.1172971
APA Yurtgezen Z, Ercetin D, SAPMAZ METIN M (2022). Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. Batı Karadeniz Tıp Dergisi, 6(3), 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
Chicago Yurtgezen Zekiye Gülfem,Ercetin Deniz,SAPMAZ METIN Melike Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. Batı Karadeniz Tıp Dergisi 6, no.3 (2022): 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
MLA Yurtgezen Zekiye Gülfem,Ercetin Deniz,SAPMAZ METIN Melike Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. Batı Karadeniz Tıp Dergisi, vol.6, no.3, 2022, ss.259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
AMA Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. Batı Karadeniz Tıp Dergisi. 2022; 6(3): 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
Vancouver Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji. Batı Karadeniz Tıp Dergisi. 2022; 6(3): 259 - 266. 10.29058/mjwbs.1172971
IEEE Yurtgezen Z,Ercetin D,SAPMAZ METIN M "Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji." Batı Karadeniz Tıp Dergisi, 6, ss.259 - 266, 2022. 10.29058/mjwbs.1172971
ISNAD Yurtgezen, Zekiye Gülfem vd. "Fare ve Sıçanlarda Dişi Genital Kanalı Değerlendirmenin Kolay Bir Yolu: Vajinal Sitoloji". Batı Karadeniz Tıp Dergisi 6/3 (2022), 259-266. https://doi.org/10.29058/mjwbs.1172971