Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi

Tayfun AKTAŞ, (Bülent Ecevit Üniversitesi, Fen Edebiyat Fakültesi, Biyoloji Bölümü, Zonguldak, Türkiye)
Hatice ÇÖLGEÇEN (Bülent Ecevit Üniversitesi, Fen Edebiyat Fakültesi, Biyoloji Bölümü, Zonguldak, Türkiye)
Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi
8 0
Yıl: 2017 Cilt: 7 Sayı: 2 Sayfa Aralığı: 665 - 673 Metin Dili: Türkçe DOI: 10.7212/zkufbd.v7i2.569 İndeks Tarihi: 03-04-2019

Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi

Öz:
Flavonoidler sağlık ve gıda alanlarında kullanılan fenolik bileşiklerdir. Bitkilerdeki flavonoidlerin üretimi bitki doku kültürüçalışmalarıyla arttırılmaktadır. Bu çalışmada, flavonoidlerin tanımı, önemi ve çeşitleri hakkında kısaca bilgi verilmiştir. Ayrıca bitkidoku kültürü teknikleriyle flavonoidlerin üretimi örneklerle açıklanmıştır. Kallus kültürü, hücre süspansiyon kültürü, saçak kök kültürüve biyoreaktörle flavonoidlerin üretimi çalışmalarından bahsedilmiştir.
Anahtar Kelime:

Production of Flavonoids by Plant Tissue Culture Techniques in From Different Plant Species

Öz:
Flavonoids are phenolic compounds in healthcare and food areas. Production of flavonoids in plants are provided with plant tissue culture studies. In this study, brief information was given about the definition, importance and varieties of flavonoids. Furthermore production of flavonoids with plant tissue culture techniques were explained with examples. Studies on callus culture, cell suspension culture, hairy root culture and production of flavonoids with bioreactor were mentioned.
Anahtar Kelime:

Belge Türü: Makale Makale Türü: Derleme Erişim Türü: Erişime Açık
  • Akçam-Oluk, E. 2006. Bitki Hücre Süspansiyon Kültürleri ve Sekonder Metabolit Üretimi. Anadolu Üni. Bil. ve Tek. Der., 7(2): 303-310.
  • Ames, TT., Worden, RM. 1997. Continuous Production of Daidzein and Genistein from Soybean in a Magnetofluidized Bed Bioreactor. Biotechnol. Prog, 13: 336-339.
  • Asada, Y., Li, W., Yoshikawa, T. 1997. Isoprenylated Flavonoids From Hairy Root Cultures of Glycyrrhıza glabra. Phytoche., 47(3): 389-392
  • Begum, AA., Leibovitch, S., Migner, P., Zhang, F. 2001. Specific flavonoids induced nod gene expression and pre-activeted nod genes of rhizobium leguminosarum increased pea ( pisum sativum L.) and lentil (Lens culinaris L.) nodulation in controlled growth chamber environments. Jour. of Exper. Bot., 52 (360): 1537-1543.
  • Beninger, CW., Hosfield, GL. 2003. Antioxidant Activity of Extracts, Condensed Tannin Fractions, and Pure Flavonoids from Phaseolus vulgaris L. Seed Coat Color Genotypes. J. Agricultural Food Chem., 51: 7879-7883.
  • Bharati, AJ., Bansal, YK. 2014. In Vitro Production of Flavonoids: A Review. World J. Pharmacy Pharmaceutical Sci., 3(6): 508- 533.
  • Birman H. 2012. Bitkisel Flavonoid Bileşiklerinin Biyoaktiviteleri ve Muhtemel Etki Mekanizmaları. İst. Tıp Fak. Derg., 75: 3.
  • Boss, PK., Davies, C., Robinson, SP. 1996. Expression of anthocyanin biosynthesis pathway genes in red and white grapes. Plant Mol. Bio., 32(3): 565-569.
  • Colliver, SP., Morris, P., Robbins, MP. 1997. Differential modification of flavonoid and isoflavonoid biosynthesis with an antisense chalcone synthase construct in transgenic Lotus corniculatus. Plant Mol. Bio., 35: 509–522.
  • Çölgeçen, H., Koca, Çalışkan, U., Kartal, M., Büyükkartal, HN. 2013. Comprehensive evaluation of phytoestrogen accumulation in plants and in vitro cultures of Medicago sativa L. ‘Elçi’ and natural tetraploid Trifolium pratense L. Turkish J. Biol., 38: 619-627.
  • El-Beltagi, HS., Ahmeda, OK., El-Desouky, W. 2011. Effect of low doses y-irradiation on oxidative stres and secondary metabolites production of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) callus culture. Radiation Phy. Chem., 80: 968–976. Farag, MA., Huhman, DV., Lei, Z., Sumner, LW. 2007.
  • Metabolic profiling and systematic identification of flavonoids and isoflavonoids in roots and cell suspension cultures of Medicago truncatula using HPLC–UV–ESI–MS and GC– MS. Phytochemistry, 68: 342–354.
  • Fritzemeier, KH., Rolfs, CH., Pfau, J., Kindlt, H. 1987. Action of ultraviolet-C on stilbene formation in callus of Arachis bypogaea. Planta, 172:238-244.
  • Goyal, S., Sharma, V., Ramawat, KG. 2011. Marked effect of Cuscuta on puerarin accumulation in cell cultures of Pueraria tuberosa grown in shake flasks and a bioreactor. Plant Biotech. Rep., 5:121–126.
  • Han, H., Baik, B. 2008. Antioxidant activity and phenolic content of lentils (Lens culinaris), chickpeas (Cicer arietinum L.), peas (Pisum sativum L.) and soybeans (Glycine max), and their quantitative changes during processing. International Jour. of Food Sci. and Techno., 43: 1971–1978.
  • Han, H., Baik, BK. 2008. Antioxidant activity and phenolic content of lentils (Lens culinaris), chickpeas (Cicer arietinum), peas (Pisum sativum) and soybeans (Glicine max), and their quantitative change during processing. International Jour. of Food Sci. and Techno., 43: 1971-1978.
  • Hazer, Y. 2015. Bryum Capillare Hedw., Sphagnum Palustre L. ve Thamnobryum Alopecurum (Hedw.) Gangulee’nin Doku Kültürü Yöntemleriyle Çoğaltılması, Biyolojik Aktivite ve Fenolik İçeriklerinin Tesbiti. Doktora tezi. Bülent Ecevit Üniversitesi.
  • He, XZ., Reddy, JT., Dixon, RA. 1998. Stress responses in alfalfa (Medicago sativa L). XXII. cDNA cloning and characterization of an elicitor-inducible isoflavone 7-O-methyltransferase. Plant Mol. Bio., 36: 43–54. http://www.food-info.net/tr/e/ e300-400.htm
  • Işık FE. 2005. Edirne Bölgesinde Yetişen Trifolium resupinatum L. var. Microcephalum Bitkisinin Fitokimyasal İncelenmesi. Doktora tezi. Trakya Üniversitesi.
  • Jose, J., Sudhakaran, S., Dhanya, AT., Kumar, STM., Jayaraman, S., Variyar, JE. 2014. In Vıtro Studıes of Immunomodulatory and Free Radıcal Scavengıng Actıvıtıes of Flavonoıd Isolated From Mımosa Pudıca. International Jour. of Pharmaceutical Sci. and Res., 5(10): 4254-4261.
  • Kahraman, A., Serteser, M., Köken T. 2002. Flavonoidler. Kocatepe Tıp Der., 3:01-08.
  • Kasparova, M., Siatka, T., Klimesova, V., Dusek, J. 2012. New Synthetic Pyridine Derivate as Potential Elicitor in Production of Isoflavonoids and Flavonoids in Trifolium pratense L. Suspension Culture. The Scientific World Jour., 5 sayfa.
  • Konate, AI., Koulibaly, A., Coulıbaly, I., Berraho, EB. 1983. Phosphate Solubilizing of Carob (Ceratonia siliqua L) Associative Bacteria Analyzed by Molecular Technique. Planta, 159:25-29.
  • Kumar, S., Pandey, AK. 2013. Chemistry and Biological Activities of Flavonoids: An Overview. Bio. of Plants, 6: 34.
  • Li, W., Asada, Y., Yoshikawa, T. 2000. Flavonoid constituents from Glycyrrhiza glabra hairy root cultures. Phytochemistry, 55: 447-456.
  • Lila, MA. 2004. Anthocyanins and Human Health: An In Vitro Investigative Approach. J. Biomed. Biotechnol., 5: 306–313.
  • Lucchesini, M., Bertoli, A., Mensuali-Sodi, A., Cappelli, Cecilia Noccioli, C., Luciardi, L., Pistelli, L. 2010. Cytisus aeolicus Guss. ex Lindl. in vitro cultures and genistin production. Central European J. Biol., 5(1): 111-120.
  • Luczkiewicz, M., Glo´d, D. 2003. Callus cultures of Genista plants in vitro material producing high amounts of isoflavones of phytoestrogenic activity. Plant Sci., 165: 1101-1108.
  • Łuczkiewicz, M., Gło´d, D., Baczek2, T., Bucin´ski, A. 2004. LC-DAD UV and LC-MS for the Analysis of Isoflavones and Flavones from In Vitro and In Vivo Biomass of Genista tinctoria L. Chromatographia, 60: 179-185.
  • Łuczkiewicz, M., Kokotkiewicz, A. 2005. Genista tinctoria Hairy Root Cultures for Selective Production of Isoliquiritigenin. Verlag der Zeitschrift für Natur., 60: 867-875.
  • Matti, Vihakas. 2014. Flavonoids and Other Phenolic Compounds: Characterization and Interactions with Lepidopteran and Sawfly Larvae. Turun Yliopiston Jul.
  • Nijveldt, RJ., Nood, EV., Hoorn, DECV., Boelens, PG., Norren, KV., Leeuwen, PAMV. 2001. Flavonoids: a review of probable mechanisms of action and potential aplications. Am. J. Clin. Nutr., 74: 418–25.
  • Paiva, NL., Edwards, R., Sun, Y., Hrazdina, G., Dixon, RA. 1991. Stress responses in alfalfa (Medicago sativa L.) 11. Molecular cloning and expression of alfalfa isoflavone reductase, a key enzyme of isoflavonoid phytoalexin biosynthesis. Plant Mol. Biol., 17: 653-667.
  • Prakash, D., Upadhyay, G., Singh, BN., Singh, HB. 2007. Antioxidant and free radical-scavenging activities of seeds and agri-wastes of some varieties of soybean (Glycine max). Food Chem., 104: 783–790.
  • Rolfs, CH., Schon, H., Steffens, M., Kindl, H. 1987. Cellsuspension culture of Arachis hypogaea L.: model system of specific enzyme induction in secondary metabolism. Planta, 172:238-244.
  • Segev, A., Badani, H., Kapulnik, Y., Shomer, I., OrenShamir, M., Galili, S. 2010. Determination of Polyphenols, Flavonoids, and Antioxidant Capacity in Colored Chickpea (Cicer arietinum L.). J. Food Sci., 75(2): 115-119.
  • Sharma, V., Goyal, S., Ramawat, KG. 2009. Scale up production of isoflavonoids in cell suspension cultures of Pueraria tuberosa grown in shake flasks and bioreactor. Eng. Life Sci., 9(3): 267– 271.
  • Takeya, K., Itokawa, H. 1981. Isoflavonoids and the Other Constituents in Callus Tissues of Pueraria lobata. Tokyo College Phar., 30: 1496-1499.
  • Tumova, L., Tuma, J. 2011. The effect of UV light on isoflavonoid production in Genista tinctoria culture in vitro. Acta Phys. Plant, 33: 635–640.
  • Topçu, Ş., Çölgeçen, H. 2015. Bitki Sekonder Metabolitlerinin Biyoreaktörlerde Üretilmesi. Türk Bilimsel Derl. Der., 8 (2): 09-29.
  • Upman, S., Sarin, R. 2011. Production of flavonoids from Indigofera cordifolia and I. linnaei in vivo and in vitro tissue cultures. Int. J. Nat. Products Res., 1 (1): 4-8.
  • Vierstra, RD., John, TR., Msu-doe, KLP. 1982. Kaempferol 3-0-Galactoside, 7-0-Rhamnoside is the Major Green Fluorescing Compound in the Epidermis of Vicia faba. Plant Phy., 69: 522-525.
  • Zhang, HC., Liu, JM., Lu, HY., Gao, SL. 2009. Enhanced flavonoid production in hairy root cultures of Glycyrrhiza uralensis Fisch by combining the over-expression of chalcone isomerase gene with the elicitation treatment. Plant Cell Rep., 28: 1205–1213.
APA AKTAŞ T, Colgecen H (2017). Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. , 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
Chicago AKTAŞ Tayfun,Colgecen Hatice Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. (2017): 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
MLA AKTAŞ Tayfun,Colgecen Hatice Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. , 2017, ss.665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
AMA AKTAŞ T,Colgecen H Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. . 2017; 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
Vancouver AKTAŞ T,Colgecen H Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. . 2017; 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
IEEE AKTAŞ T,Colgecen H "Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi." , ss.665 - 673, 2017. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
ISNAD AKTAŞ, Tayfun - Colgecen, Hatice. "Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi". (2017), 665-673. https://doi.org/10.7212/zkufbd.v7i2.569
APA AKTAŞ T, Colgecen H (2017). Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi, 7(2), 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
Chicago AKTAŞ Tayfun,Colgecen Hatice Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi 7, no.2 (2017): 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
MLA AKTAŞ Tayfun,Colgecen Hatice Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi, vol.7, no.2, 2017, ss.665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
AMA AKTAŞ T,Colgecen H Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi. 2017; 7(2): 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
Vancouver AKTAŞ T,Colgecen H Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi. Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi. 2017; 7(2): 665 - 673. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
IEEE AKTAŞ T,Colgecen H "Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi." Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi, 7, ss.665 - 673, 2017. 10.7212/zkufbd.v7i2.569
ISNAD AKTAŞ, Tayfun - Colgecen, Hatice. "Farklı Bitki Türlerinden Bitki Doku Kültürü Teknikleriyle Flavonoidlerin Üretimi". Karaelmas Fen ve Mühendislik Dergisi 7/2 (2017), 665-673. https://doi.org/10.7212/zkufbd.v7i2.569
Sayfa Oluşturulma Tarihi
16-05-2024 8:19

İLETİŞİM

TÜBİTAK ULAKBİM TR Dizin

Yüzüncüyıl, İşçi Blokları Mahallesi

Muhsin Yazıcıoğlu Caddesi No:51/C

06530 Çankaya / ANKARA +90 (312) 298 92 00

trdizin@tubitak.gov.tr

TÜBİTAK ULAKBİM Ulusal Akademik Ağ ve Bilgi Merkezi Cahit Arf Bilgi Merkezi © Tüm Hakları Saklıdır. Gizlilik Politikası Kullanım Şartları