Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi
Yıl: 2019 Cilt: 36 Sayı: 2 Sayfa Aralığı: 141 - 145 Metin Dili: Türkçe DOI: 10.16882/derim.2019.611536 İndeks Tarihi: 23-10-2020
Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi
Öz: Bu çalışmanın amacı; Verticillium solgunluğuna dayanımın, bitki dokularında sentezlenen fitoaleksin miktarıylailişkisini araştırmaktır. Çalışmada Long Purple patlıcan çeşidi (hastalığa duyarlı) ile S. sisymbriifolium yabani türü(hastalığa dayanıklı) bitkisel materyal olarak kullanılmıştır. Elisitör olarak, araşidonik asit (5 ve 10 mM) çalışmadayer almıştır. Elisitör ile uyarım işlemi 24, 48 ve 72 saat olarak uygulanmıştır. Ekstrakte edilen maddeler gaz likitkromotografisi (GLC) cihazında analiz edilmiştir. Dayanıklı türün kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksinoluşumu yeterli düzeyde uyarılamamıştır. Elde edilen bulgular araşidonik asidin kallus süspansiyon kültüründesadece Long Purple çeşitinde fitoaleksinlerin oluşumunu uyarmada etkili olduğu, in vitro koşularda doku fazındasolavetivon ve süzüntü fazında ise lubimin maddelerinin biriktiği belirlenmiştir. En yüksek madde birikimleri her ikifazda ‘10 mM araşidonik asit x 72 saat uyarı süresi’ kombinasyonunda elde edilmiş, ‘doz x uygulama süresi’etkileşimi önemli bulunmuştur.
Anahtar Kelime: The effect of arachidonic acid elicitor on phytoalexin stimulation in eggplant callus suspension culture
Öz: The aim of this study was to investigate the relationship between the resistance of Verticillium wilt and the amount of phytoalexin, which is the defense molecules synthesized in plant tissues. In this study, Long Purple eggplant variety (disease susceptible) and S. sisymbriifolium wild type (disease resistant) were used as plant material. As elicitor, arachidonic acid (5 and 10 mM) was included in the study. Stimulation with elicitor lasted 24, 48 and 72 hours. Extracted substances were analyzed in gas liquid chromatography (GLC). The formation of phytoalexin was not adequately stimulated in the callus suspension culture of the resistant species. The results showed that arachidonic acid was effective in stimulating the formation of phytoalexins in the callus suspension culture in Long Purple variety, and in the in vitro conditions solavetivone was formed in the tissue phase and lubimin substances in the filtrate phase. The highest material accumulations were obtained in both phases: ’10 mM arachidonic acid x 72 hours’ ‘elicitor dose x stimulation period’ interaction was found to be significant.
Anahtar Kelime: Belge Türü: Makale Makale Türü: Araştırma Makalesi Erişim Türü: Erişime Açık
- Ahmed, E.S., El- Essaway, A.A., Abou El-Hawa, M.E., Ezzat, S.M., & Metwaly, M.B. (1997). Biotic and abiotic initiators for rishitin formation and accumulation in tomato. Folia Microbiologica, 42(5):468-472.
- Bletsos, F.A.,Stavropoulos, N.I., Papdopoulou, P.P., & Antonopoulou, P.D. (2004). Evaluation of eggplant (Solanum melongena L.) germplasm for resistance to Verticillium wilt. Advances in Horticultural Science, 18(1):33-37.
- Bostock, R.M., & Kuc, J.A. (1981). Eicosapentaenoic and arachidonic acid from Phytophthora infestans elicit fungutoxic sesquiterpenoids in the potato. Science, 212(4490):67-69.
- Desjardins, A.E., Mccormick, S.P., Plaisted, R.L., & Brodie, B.B. (1997). Association between solavetivone production and resistance to Globodera rostochiensis in potato. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 45(6):2322- 2326.
- D'harlinque, A., Mamdouh, A.M., Malfatti, P., Souline, M.C., & Bombeix, G. (1995). Evidence for rishitin biosynthesis in tomato cultures. Phytochemistry, 39(1):69-70.
- Ebel, J., Cosio, E.G., Grab, D., & Habereder, H. (1989). Stimulation of phytoalexin accumulation in fungus-infected roots and elicitor-treated cell cultures of soybean (Glycine max L.). Primary and Secondary Metabolism of Plant Cell Cultures II (ed: Kurz, W.G.W.), p. 229- 236. Berlin, Springer Verlag.
- Elekçioğlu, I.H., Canihoş, Y., Özgönen, H., Söğüt, M.A., Albajes, R., & Şekeroğlu, E. (2000). Induction of resistance on eggplants against Verticillium wilt disease and root-knot nematodes using biotic and abiotic factors. Bulletin OILBSROP, 23(1):63-69.
- Freed, R., Einensmith, S.P., Guets, S., Reicosky, D., Smail, V.W., & Wolberg, P. (1989). User’s guide to MSTAT-C, an analysis of agronomic research experiment. Michigan State University, USA.
- González-Lamothe, R., Mitchell, G., Gattuso, M., Diarra, M.S., Malouin, F., & Bouarab, K. (2009). Plant antimicrobial agents and their effects on plant and human pathogens. International Journal of Molecular Sciences,10(8):3400-3419.
- Hoshino, T., Chida, M., Yamaura, T., Yoshizaura, Y., & Mizutani, J. (1994). Phytoalexin induction in green pepper cell cultures treated with arachidonic acid. Phytochemistry, 36(6):1417- 1419.
- Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiology Plantarum, 15(3):473-497.
- Nagaoka, T., Goto, K., Watanabe, A., Sakata, Y., & Yoshihara, T. (2001). Sesquiterpenoids in root exudates of Solanum aethiopicum. Zeitschrift für Naturforschung. Section C Biosciences, 56(9-10):707-713.
- Ozeretskovskaya, O.L., Varlamov, V.P., Vasyukova, N.I., Chalenko, G.I., Gerasimova, N.G., & Panina, Y.S. (2004). Influence of systemic signal molecules on the rate of spread of the immunizing effect of elicitors over potato tissues. Applied Biochemistry and Microbiology. 40(2):213-216.
- Raaymakers, T.M., & Van den Ackerveken, G. (2015). Extracellular recognition of oomycetes during biotrophic infection of plants. Frontiers in Plant Science, 7:906. doi: 10.3389/fpls.2016.00906.
- Robinson, R.W., Shail, J.W., Gao, Y., & Doganlar, S. (2000). Interspecific hybridization of eggplant for Verticillium wilt resistance and other useful traits. http:// bgard-sci.kund.nl/eggnet/egginfo. Erişim tarihi: 01.09.2003.
- Rozhnova, N.A., Gerashchenkov, G.A., & Babosha, A.V. (2003). The effect of arachidonic acid and viral infection on the phytohemagglutinin activity during the development of tobacco acquired resistance. Russian Journal of Plant Physiology, 50(5): 661-665.
- Sevin, M., Sevin, N., Uslu Kıran, S., & Ellialtıoğlu, Ş. (2010). Determination of relation between resistance to Verticillium dahliae Kleb. and phytoalexins accumulation in some Solanum species (in Turkish). Proceedings of the VIII. National Vegetable Growing Symposium, Van, Turkey. p: 444-447.
- Uslu Kıran, S., Ellialtıoğlu, Ş., Dolar, F.S., Üstün, A.S., Mehmetoğlu, Ü., & Bayraktar, H. (2007). Patlıcanda Verticillium solgunluğuna dayanıklılık ile kallus kültüründe solavetivon birikimi arasındaki ilişkinin incelenmesi. Yüzüncü Yıl Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi, 12(1):45-53.
- Uslu Kıran, S., Ellialtıoğlu, Ş., Mehmetoğlu, & Ü., Üstün, S. (2010). Patlıcandaki bazı fitoaleksinlerin hastalıklara dayanıklılık özelliği ile ilişkileri ve analiz yöntemleri. VIII.Sebze Tarımı Sempozyumu, 23-26 Haziran 2010, Van. Bildiri Kitabı (Eds: Yaşar, F., Çavuşoğlu, Ş., Biçim, M.), s. 448-454.
- Yakose, T., Kamoto, K., Park, S., Matsuura, H., & Yoshihara, T. (2004). Anti-fungal sesquiterpenoid from the root exudate of Solanum abutiloides. Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 68(12): 2640-2642.
- Zhang, W.W., Wang, S.Z., Liu, K., Si, N., Qi, F.J., & Jian, G.J. (2012). Comparative expression analysis in susceptible and resistant Gossypium hirsutum responding to Verticillium dahliae infection by cDNA-AFLP. Physiological and Molecular Plant Pathology, 80:50-57 doi.org/10.1016/j.pmpp.2012.09.001.
| APA | Kıran S, ELLİALTIOĞLU Ş (2019). Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. , 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| Chicago | Kıran Sevinç,ELLİALTIOĞLU Ş.Şebnem Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. (2019): 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| MLA | Kıran Sevinç,ELLİALTIOĞLU Ş.Şebnem Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. , 2019, ss.141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| AMA | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. . 2019; 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| Vancouver | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. . 2019; 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| IEEE | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş "Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi." , ss.141 - 145, 2019. 10.16882/derim.2019.611536 |
| ISNAD | Kıran, Sevinç - ELLİALTIOĞLU, Ş.Şebnem. "Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi". (2019), 141-145. https://doi.org/10.16882/derim.2019.611536 |
| APA | Kıran S, ELLİALTIOĞLU Ş (2019). Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. Derim, 36(2), 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| Chicago | Kıran Sevinç,ELLİALTIOĞLU Ş.Şebnem Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. Derim 36, no.2 (2019): 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| MLA | Kıran Sevinç,ELLİALTIOĞLU Ş.Şebnem Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. Derim, vol.36, no.2, 2019, ss.141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| AMA | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. Derim. 2019; 36(2): 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| Vancouver | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi. Derim. 2019; 36(2): 141 - 145. 10.16882/derim.2019.611536 |
| IEEE | Kıran S,ELLİALTIOĞLU Ş "Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi." Derim, 36, ss.141 - 145, 2019. 10.16882/derim.2019.611536 |
| ISNAD | Kıran, Sevinç - ELLİALTIOĞLU, Ş.Şebnem. "Araşidonik asidin patlıcan kallus süspansiyon kültüründe fitoaleksin uyartımı üzerine etkisi". Derim 36/2 (2019), 141-145. https://doi.org/10.16882/derim.2019.611536 |
