BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi

GOKÇE, ELIF; GÜL, ZÜLFIYE; ALÇAY, SELİM

BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi

Elif GÖKÇE, (Uludağ University)

Selim ALÇAY, (Uludağ University)

Zülfiye GÜL (Uludağ University)

Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi

5 0

Yıl: 2017 Cilt: 64 Sayı: 4 Sayfa Aralığı: 313 - 320 Metin Dili: Türkçe İndeks Tarihi: 29-07-2022

BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi

Öz:

Bu çalışmada, farklı dozlarda BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5°C'ta kısa sureli saklanması üzerindeki etkisinin değerlendirilmesi amaçlandı. Çalışma amacıyla alınan spermalar pooling yapılarak dört eşit hacme bölündü ve 5mg/mL, 7.5mg/mL, 10mg/mL BSA ilave edilmiş (BSA5, BSA7.5, BSA10 sırasıyla) ve edilmemiş (kontrol) sulandırıcılarla sulandırıldı. Sulandırılmış spermanın sıcaklığı 5°C'a düştükten sonra 0, 24, 48 ve 72. saatlerde; motilite, plazma membran fonksiyonel bütünük [hipoozmotik şişme testi (HOST)] ve akrozomal hasar [FITC-Pisum sativum agglutinin (PSA-FITC)] muayeneleri yapıldı. Çalışmanın başlangıcı ve sonunda antioksidan aktivitenin ve lipid peroksidasyonun değerlendirilmesi için malondialdehyde (MDA) ve glutathionine (GSH) konsantrasyonları ölçüldü. Ayrıca 2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) ve Dichloro-dihydro-fluorescein diacetate (DCFH-DA) yöntemleri ile her bir sulandırıcının antioksidan kapasiteleri değerlendirildi. Yapılan muayenelerin sonucunda; 5mg/mL BSA ilavesinin koç spermasının kısa süreli muhafazasında etkili olduğu gözlemlendi. Ayrıca artan BSA konsantrasyonunun spermanın soğutularak saklanmasında olumsuz etki oluşturduğu belirlendi

Anahtar Kelime:

Konular: Biyoloji

Positive effect of BSA supplemented soybean lecithin based extender on liquid storage of ram semen at 5C

Öz:

The aim of the study was to evaluate different BSA doses in soybean-lecithin based extenders for liquid storage of ram semen. Pooled semen was divided into four equal volumes and diluted in a single-step dilution method with BSA supplemented (BSA5, BSA7.5, BSA10 groups supplemented 5mg/mL, 7.5mg/mL, 10mg/mL BSA respectively) and BSA-free (control) extenders. Semen samples were assessed for sperm motility, plasma membrane functional integrity using hypo-osmotic swelling test (HOST), damaged acrosome using FITC-Pisum sativum agglutinin (PSA-FITC) at 0, 24, 48 and 72h of storage at 5 °C. Antioxidant activities of groups at 0 and 72h were measured with glutathionine (GSH) concentration, membrane lipid peroxidation status was analyzed using the malondialdehyde (MDA) concentration. Antioxidant capacity of extender also was measured with 2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) and Dichloro-dihydro-fluorescein diacetate (DCFH-DA) assays. In the study, BSA (5mg/mL) supplementation has beneficial effect on ram sperm parameters at all evaluation times. In addition, the increasing doses of BSA supplementation has a negative effect on sperm parameters especially 48 and 72h of storage

Anahtar Kelime:

Konular: Biyoloji

Belge Türü: Makale Makale Türü: Araştırma Makalesi Erişim Türü: Erişime Açık

1. Agarwal A, Makker K, Sharma R (2008): Clinical relevance of oxidative stress in male factor infertility: An update. J Reprod Immunol, 59, 2-11.
2. Akhter S, Rakha BA, Iqbal R, et al. (2014): Effect of bovine serum albumin on motility, plasmalemma, viability and chromatin integrity of buffalo bull spermatozoa and chromatin integrity of buffalo bull spermatozoa. Pakistan J Zool, 46, 115-120.
3. Alçay S, Gökçe E, Toker MB, et al. (2016): Freeze-dried egg yolk based extenders containing various antioxidants improve post-thawing quality and incubation resilience of goat spermatozoa. Cryobiology, 72, 269-273.
4. Alçay S, Toker MB, Üstüner B, et al. (2014): Investigation of relationships between DNA integrity and fresh semen parameters in rams. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 20, 793- 798.
5. Alçay S, Toker MB, Gökçe E, et al. (2015): Successful ram semen cryopreservation with lyophilized egg yolk-based extender. Cryobiology, 71, 329-333.
6. Amidi F, Farshad A, Khor AK (2010): Effects of cholesterol-loaded cyclodextrin during freezing step of cryopreservation with TCGY extender containing bovine serum albumin on quality of goat spermatozoa. Cryobiology, 61, 94-99.
7. Anghel A, Zamfirescu S, Dragomir C, et al. (2010): The effects of antioxidants on the cytological parameters of cryopreserved buck semen. Rom Biotech Lett, 15, 26-32.
8. Bakst MR, Cecil HC (1992): Effect of bovine serum albumin on motility and fecundity of turkey spermatozoa before and after storage. J Reprod Fert, 94, 287-293.
9. Ball BA, Medina V, Gravance CG, et al. (2001): Effect of antioxidants on preservation of motility, viability and acrosomal integrity of equine spermatozoa during storage at 5C. Theriogenology, 56, 577-589.
10. Bouayed J, Bohn T (2010): Exogenous antioxidantsdouble-edged swords in cellular redox state health beneficial effects at physiologic doses versus deleterious effects at high doses. Oxid Med Cell Longev, 3, 228-237.
11. Bucak MN, Çoyan K, Öztürk C, et al. (2012): Methionine supplementation improves ram sperm parameters during liquid storage at 5 C. Cryobiology, 65, 335-337.
12. Bucak MN, Tekin N (2007): Protective effect of taurine, glutathione and trehalose on the liquid storage of ram semen. Small Rum Res, 73, 103-108.
13. Bucak MN, Tuncer PB, Sarıözkan S, et al. (2009): Comparison of the effects of glutamine and an amino acid solution on post-thawed ram sperm parameters, lipid peroxidation and anti-oxidant activities. Small Rum Res, 81, 13-17.
14. Çoyan K, Başpınar N, Bucak MN, et al. (2010): Influence of methionine and dithioerythritol on sperm motility, lipid peroxidation and antioxidant capacities during liquid storage of ram semen. Res Vet Sci, 89, 426-431.
15. Davis BK, Byrne R, Hun B (1979): Studies on the mechanism of capacitation. II. Evidence for lipid transfer between plasma membrane of rat sperm and serum albumin during capacitation in vitro. Biochim Biophys Acta, 558, 257-266.
16. De Paz P, Esteso MC, Alvarez M, et al. (2010): Development of extender based on soybean lecithin for its application in liquid ram semen. Theriogenology, 74, 663- 671.
17. Demircan C, Gül Z, Büyükuysal RL (2014): High glutamate attenuates S100B and LDH outputs from rat cortical slices enhanced by either oxygen-glucose deprivation or menadione. Neurochem Res, 39, 1232-1244.
18. Dorman HJD, Peltoketo A, Hiltunen R, et al. (2003): Characterization of antioxidant properties of de-odourized aqueous extracts from selected Lamiaceae herbs. Food Chem, 83, 255-262
19. El-Kon I (2011): Testing usability of bovine serum albumin (BSA) for preservation of Egyptian Buffalo semen. Am Eurasian J Agric Environ Sci, 11, 495-502.
20. Ellman GL (1959): Tissue sulfhydryl groups. Arch Biochem Biophys, 82, 70-77.
21. Gaspar J, Rodrigues A, Laires A, et al. (1994): On the mechanisms of genotoxicity and metabolism of quercetin. Mutagenesis, 9, 445-449.
22. Gündoğan M (2009): Short term preservation of ram semen with different extenders. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 15, 429-435.
23. Gündoğan M, Tekerli M, Uçar M, et al. (2003): Effect of diluents on motility of ram sperm during storage at 5 C. Arch Androl, 49, 69-75.
24. Gündoğan M, Yeni D, Avdatek F, et al. (2010): Influence of sperm concentration on the motility, morphology, membrane and DNA integrity along with oxidative stress parameters of ram sperm during liquid storage. Anim Reprod Sci, 122, 200-207.
25. Hodnick WF, Kung FS, Roettger WJ, et al. (1986): Inhibition of mitochondrial respiration and production of toxic oxygen radicals by flavonoids. A structure-activity study. Biochem Pharmacol, 35, 2345-2357.
26. Hossain MS, Hyeong LJ, Miah AG, et al. (2007): Effect of fatty acids bound to bovine serum albumin-V on acrosome reaction and utilization of glucose in boar spermatozoa. Reprod Med Biol, 6, 109-115.
27. Kankofer M, Kolm G, Aurich J (2005): Activity of glutathione peroxidase, superoxide dismutase and catalase and lipid peroxidation intensity in stallion semen during storage at 5 C. Theriogenology, 63, 1354-1365.
28. Matsuoka T, Imai H, Kohno H, et al. (2006): Effect of bovine serum albumin and trehalose in semen diluents for improvement of frozen-thawed ram semen. J Reprod Dev, 52, 675-683.
29. Maxwell WMC, Salamon S (1993): Liquid storage of ram semen: A review. Reprod Fertil Dev, 5, 613-638.
30. Metodiewa D, Jaiswal AK, Cenas N, et al. (1999): Quercetin may act as a cytotoxic prooxidant after its metabolic activation to semiquinone and quinoidal product. Free Radic Biol Med, 26,107-116.
31. Naijian HR, Kohram H, Zare SA, et al. (2013): Effects of various concentrations of BSA on microscopic and oxidative parameters of Mahabadi goat semen following the freeze-thaw process. Small Rum Res, 113, 371-375.
32. Ochiai M, Nagao M, Wakabayashi K, et al. (1984): Superoxide dismutase acts as an enhancing factor for quercetin mutagenesis in rat-liver cytosol by preventing its decomposition. Mutat Res, 129, 19-24.
33. Sarıözkan S, Tuncer PB, Bucak MN, et al. (2009): Influence of various antioxidants on microscopic-oxidative stress indicators and fertilizing ability of frozen-thawed bull semen. Acta Vet Brno, 78, 463-469.
34. Sarıözkan S, Türk G, Cantürk F, et al. (2013): The effect of bovine serum albumin and fetal calf serum on sperm quality, DNA fragmentation and lipid peroxidation of the liquid stored rabbit semen. Cryobiology, 67, 1-6.
35. Toker MB Alçay S, Gökçe E, et al. (2016): Cryopreservation of ram semen with antioxidant supplemented soybean lecithin-based extenders and impacts on incubation resilience. Cryobiology, 72, 205- 209.
36. Uysal O, Bucak MN (2007): Effect of oxidized serum albumin, cysteine and lycopene on the quality of frozen thawed ram semen. Acta Vet Brno, 76, 383-390.
37. Uysal O, Bucak MN, Yavaş İ, et al. (2007): Effect of various antioxidants on the quality of frozen-thawed bull semen. J Anim Vet Adv, 6, 1362-1366.
38. Üstüner B, Alçay S, Nur Z, et al. (2014): Effect of egg yolk and soybean lecithin on tris-based extender in post-thaw ram semen quality and in vitro fertility. Kafkas Univ Vet Fak Derg, 20, 393-398.
39. Watjen W, Michels G, Steffan B, et al. (2005): Low concentrations of flavonoids are protective in rat H4IIE cells whereas high concentrations cause DNA damage and apoptosis. J Nutr, 135, 525-531.
40. Xia J, Ren D (2009): The BSa-induced Ca(2+) influx during sperm capacitation is CATSPER channel-dependent. Reprod Biol Endocrinol, 7, 119-127.
Geliş tarihi: 30.05.2016 / Kabul tarihi: 06. 03.2017
Address for correspondence:
Elif GÖKÇE
Uludag University, Faculty of Veterinary Medicine,
Department of Reproduction and Artificial Insemination,
Bursa, Turkey.
e-mail: a.elif.gokce@gmail.com

APA	GOKÇE E, ALÇAY S, GÜL Z (2017). BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. , 313 - 320.
Chicago	GOKÇE ELIF,ALÇAY SELİM,GÜL ZÜLFIYE BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. (2017): 313 - 320.
MLA	GOKÇE ELIF,ALÇAY SELİM,GÜL ZÜLFIYE BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. , 2017, ss.313 - 320.
AMA	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. . 2017; 313 - 320.
Vancouver	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. . 2017; 313 - 320.
IEEE	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z "BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi." , ss.313 - 320, 2017.
ISNAD	GOKÇE, ELIF vd. "BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi". (2017), 313-320.

APA	GOKÇE E, ALÇAY S, GÜL Z (2017). BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 64(4), 313 - 320.
Chicago	GOKÇE ELIF,ALÇAY SELİM,GÜL ZÜLFIYE BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 64, no.4 (2017): 313 - 320.
MLA	GOKÇE ELIF,ALÇAY SELİM,GÜL ZÜLFIYE BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, vol.64, no.4, 2017, ss.313 - 320.
AMA	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2017; 64(4): 313 - 320.
Vancouver	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi. Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2017; 64(4): 313 - 320.
IEEE	GOKÇE E,ALÇAY S,GÜL Z "BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi." Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 64, ss.313 - 320, 2017.
ISNAD	GOKÇE, ELIF vd. "BSA ilave edilmiş lesitin bazlı sulandırıcının koç spermasının 5 C sıcaklıkta muhafaza edilmesine olumlu etkisi". Ankara Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 64/4 (2017), 313-320.